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ISSN : 1225-5009(Print)
ISSN : 2287-772X(Online)
Flower Research Journal Vol.30 No.2 pp.75-81
DOI : https://doi.org/10.11623/frj.2022.30.2.05

Seed Dormancy and Germination in Iris laevigata (Iridaceae), A Rare Species in Korea

Chung Ho Ko1, Seung Youn Lee2,3, Sang Im Oh1, Eun Hye Park1, Min Gil1, Soo Hoon Kim1, Mi Jeong Yoon1*
1Division of Plant Resources, Korea National Arboretum, Yangpyeong 12519, Korea
2Department of Horticulture and Breeding, Graduate School of Andong National University, Andong 36729, Korea
3Division of Horticulture & Medicinal Plant, Andong National University, Andong 36729, Korea

This authors contribute equally to this work.


* Corresponding author: Mi Jeong Yoon Tel: +82-31-540-2327 E-mail: mjyoon75@korea.kr
14/06/2022 22/06/2022 23/06/2022

Abstract


Iris laevigata, which belongs to the Iridaceae, is now designated as an “endangered” (EN) grade by Korea Forest Service because it does not have many natural sites known for its reckless development and damage to its natural habitats. This study was carried out to establish the propagation protocol from seed to restore the native habitat of the I. laevigata and to utilize it for ornamental purposes. Basically, the appearance and internal structure of seeds were observed and imbibition experiments were conducted. Germination rate was measured by cold stratification experiment, after warm followed by cold stratification experiment, and GA3 treatment experiment. The seeds had underdeveloped embryos, which had grown to about 25% of those of fully matured seed before germination. In the controlled laboratory experiment, after cold stratification at 5°C for 0, 4, 8, or 12 weeks, the seeds germinated to 0, 11.7, 43.4, or 51.7%, respectively, after 4 weeks of incubation at 25°C. After warm stratification (25°C, 8 weeks) followed by cold stratification for 0, 4, 8, or 12 weeks, the seeds germinated to 0, 51.7, 85.0, or 88.3%, respectively, after 4 weeks of incubation at 25°C. GA3 treatment did not overcome the dormancy. Our study determined the dormancy type of I. laevigata seed. Imbibition experiments showed that there was no physical dormancy, and it was also found that there was an underdeveloped embryo when it was observed that the embryo was growing according to the period of incubation. A nd t he e m bryo grew a t relatively w arm temperatures. It is concluded that the seeds of I. laevigata have morphophysiological dormancy (deep simple MPD). This is the first report to determine the dormancy type in seeds of this valuable ornamental plant.



한국 희귀식물 제비붓꽃(Iris laevigata) 종자의 휴면과 발아

고 충호1, 이 승연2,3, 오 상임1, 박 은혜1, 길 민1, 김 수훈1, 윤 미정1*
1국립수목원 식물자원연구과
2국립안동대학교 대학원 원예육종학과
3국립안동대학교 원예・생약융합학부

초록


붓꽃과에 속하는 제비붓꽃은 대한민국 산림청에서 지정한 희귀식물로 위기종 등급으로 분류되어 있다. 그 이유는 무분 별한 개발로 인해 자생지가 파괴되어 알려진 자생지가 거의 남지 않았기 때문이다. 본 연구에서는 제비붓꽃의 자생지를 보존, 복원하고 현지내외 보존을 하기 위하여 제비붓꽃 종자 의 휴면 유형을 밝히고 발아조건을 찾기 위한 실험을 수행하 였다. 실험에 사용된 종자는 국립수목원 종자은행에서 분양 받아 사용하였다. 종자의 외관과 내부 구조를 관찰 후 수분흡 수 실험을 수행하였다. 또한, 발아율을 측정하기 위하여 저온 층적처리, 고온층적처리 후 저온층적처리, GA3처리 등을 수행 하였다. 실험결과 제비붓꽃 종자는 모체에서 탈리되는 순간부 터 발아 직전까지 배가 추가로 자라는 미숙배의 형태를 가지 고 있었다. 기간(0, 4, 8, 12주)에 따른 저온층적처리 후 발아 율을 측정한 결과 각 기간별로 0, 11.7, 43.4, 51.7%의 발아율 을 기록하였다. 고온층적처리 후 저온측적처리를 한 경우 저 온층적처리 기간(0, 4, 8, 12주)에 따라 각각 0, 51.7, 85.0, 88.3%의 발아율을 기록하였다. 하지만 GA3처리로 인한 발아 율 변화는 보이지 않았다. 본 연구를 통하여 제비붓꽃 종자의 휴면유형을 분류할 수 있었다. 수분흡수 실험을 통해 물리적 휴면이 없다는 것을 밝혔고, 미숙배의 유무를 판단하여 형태 적휴면이 있다는 것을 알았다. 또한, 온도별 발아경향을 확인 하여 생리적휴면이 있기 때문에 형태생리적휴면을 가지고 있 으며, 그 중에서 deep simple MPD라는 것을 알 수 있었다.



    서 언

    제비붓꽃(Iris laevigata)은 붓꽃과에 속하는 식물로, 한국, 중국, 일본, 러시아의 연못, 개천, 강가 진흙에서 자라는 다년 생 식물이다. 5월에서 6월까지 약 12cm 지름의 보라색 꽃이 펴서 매우 높은 관상적 가치를 지니고 있다(NKISBS 2016). 붓 꽃과 식물은 전세계적으로 북반구에 200여 종 이상 널리 분포 하고 있다(Kim et al. 2004;Park 2004;Park et al. 2002). 그 중 11종 이상이 한반도에 자생한다고 알려져 있다(Kim et al. 2004;Lee 1985;Lee 1996;Park 2004). 붓꽃속 식물은 관상용 식물의 육종 소재로 매우 가치가 높을 뿐만 아니라 약용소재 로의 활용도 가능한 다양한 가치를 지닌 식물이다(Kim et al. 2004;Purev et al. 2002;Rahman et al. 2002, 2003, 2004). 그 중에서도 제비붓꽃은 산림청 지정 희귀식물로 위기종 등급 으로 지정되어 있다(KNA 2021). 또한, 환경부에서도 멸종위 기 야생식물 2급으로 지정되어 있는 보존이 필요한 식물이다 (Kim et al. 2013).

    식물의 대량증식 방법 중 실생번식법의 경우 단시간에 다량 의 개체를 확보할 수 있고 많은 노동력을 필요로 하지 않는다 는 장점이 있고, 모본과 부본의 유전자가 혼합되어 유전다양 성이 증가한다는 장점이 있지만 종자의 휴면을 타파해야 하는 단점을 가지고 있다(Ko et al. 2017;Lee et al. 2012;Ryu et al. 2017). 종자의 휴면이란 종자가 선호하는 환경에 놓였 을 때 발아되는 것을 막는 작용을 말한다(Finch-Savage and Leubner-Metzger 2006). Baskin and Baskin(2004, 2014)의 논 문에 따르면, 종자의 휴면은 그 특성에 따라 크게 생리적휴 면(physiological), 형태적휴면(morphological), 형태생리적 휴면(morphophysiological), 물리적휴면(physical), 조합휴면 (combinational)과 같이 5가지로 분류하고 있다. 이러한 휴면 들은 각각 그 휴면의 깊이에 따라 더욱 세부적으로 나눠지게 되며, 식물 분류군에 따라 다른 유형을 가진다고 보고하였다 (Baskin and Baskin 2003, 2004;Baskin and Baskin 2014).

    지금까지 연구에 따르면 대부분의 붓꽃속 식물은 형태생리 적휴면(morphophysiological dormancy: MPD)을 가지고 있 는 것으로 알려져 있으며, 그 예로 I. angustifolia(Coops and van der Velde 1995), I. pseudacorus(Grime et al. 1981), I. versicolor(Shipley and Parent 1991), I. virginica(Morgan 1990)등이 있다. 형태생리적휴면은 종자가 미숙배를 가지고 있 는 형태적휴면인 동시에 생리적휴면을 가지고 있는 휴면유형 이다(Baskin and Baskin 2004). 형태생리적휴면은 휴면의 깊이 에 따라 non-deep simple, intermediate simple, deep simple, deep simple epicotyl, deep simple double, non-deep complex, intermediate complex, deep complex, and non-deep simple epicotyl과 같이 9가지로 분류되고, 이러한 분류의 각 특징에 따라 종자의 휴면타파와 발아 방법이 달라진다(Baskin and Baskin 2004;Baskin et al. 2008). 그러나, 지금까지 한반도 자생 Iris속 식물에 대한 휴면 유형 분류 연구는 수행된 적이 없었다.

    식물의 보존과 증식, 더 나아가 산업화의 재료로서 활용하 기 위해서는 원하는 시기에 원하는 양의 균일한 묘를 생산할 수 있는 대량증식법 개발이 필수이다. 본 연구는 제비붓꽃의 종자휴면 유형을 분류하고 발아조건을 밝혀냄으로써 제비붓 꽃의 자생지 복원, 현지외 보전을 넘어 산업화 소재로 활용하 기 위한 대량증식법을 개발하기 위해 수행하였다.

    재료 및 방법

    실험재료

    본 연구는 대한민국 양평군에 위치한 국립수목원 유용식물 증식센터(37°48'S, 127°60'E)에서 실시되었다. 연구에 사용된 제비붓꽃(I. laevigata) 종자는 국립수목원 종자은행에서 분양 받아 사용하였다. 이 종자는 강원도 고성군 죽왕면 공현지리 409(GPS: 38°21"27.71, 12°83"01.55)에서 수집한 것이다. 종자 의 겉모습과 내부는 USB 현미경(AM 3111 Dino-Lite premier, AnMo Electronics Co., Taiwan)을 활용하여 촬영하였으며, 종 자 내・외부 형태조사를 위하여 면도칼(Dorco, Seoul, Korea) 로 종자를 반으로 자른 후 관찰 및 촬영을 하였다. 종자의 백 립중은 2.889 ± 0.014g으로 충실한 종자를 사용하였다.

    수분흡수 실험

    제비붓꽃 종자의 물리적휴면 유무를 알아보기 위하여 수분 흡수 실험을 수행하였다. 90mm × 15mm Petri dish에 filter paper 2장을 깔고 증류수를 추가한 다음 건조된 종자를 100립 3반복으로 처리하였다. 초기 건조종자 무게를 측정하고 3, 6, 9, 12, 24, 48시간 단위로 무게를 측정하였다. 배양시 일장은 16/8h이었고, 광도는 25μmol・m-2 ・s-1로 유지하였다. 종자의 무게 변화량은 %Ws=[(Wh-Wi)/Wi]×100의 공식을 이용하여 계산하였다. Ws=초기 건조종자의 무게 대비 증가된 종자의 무게, Wh=시간에 따른 종자의 무게, Wi=초기 종자의 무게 (Ko et al. 2017).

    종자의 소독과 배양

    실험에 들어가기 전, 종자의 표면을 소독하기 위하여 소독제 (Benomyl, FarmHannong, Seoul, Korea)를 사용하여 소독을 실시하였다. 소독제는 1,000mg・L-1의 농도로 조제를 하였고, 24 시간동안 종자를 침지 후 증류수로 3회 세척하였다. 그 후 filter paper 2장이 깔린 90mm × 15mm Petri dish에 처리별로 20립 3반복으로 파종하였다. GA3 처리와 저온층적처리는 처리 후 25℃ 식물배양상(Multi-Room Incubator, WiseCube, Wonju, Korea)에서 16/8h(light / dark)의 광주기로 130μmol・m-1 ・ss-2의 광도에서 배양하며 발아 유무를 확인하였다. 배양도중 미생물이 발생할 경우 소독제(Benomyl, FarmHannong, Seoul, Korea)를 1,000mg・L-1의 농도로 조제하여 24시간 동안 다시 침지하여 소 독하였다. 종자의 발아는 유근이 1mm 이상 자랐을 때를 기준으 로 판단하였고, 1주 단위로 발아율을 측정하였다. 발아된 종자 는 바로 제거하여 다른 종자에 영향을 미치는 것을 방지하였다.

    고온층적처리와 저온층적처리

    저온층적처리를 하기 위하여 종자를 filter paper(Whatman No.1, GE Healthcare, Buckinghamshire, UK) 2장이 깔린 90mm × 15mm Petri dish에 파종 후 증류수로 수분을 공급하 여 parafilm(Bemis Flexible Packaging, Neenah, WI 54956, USA)으로 감았다. 종자가 파종된 90mm × 15mm Petri dish를 4℃로 설정된 식물생장상(Multi-Room Incubator, WiseCube, Wonju, Korea)에서 0, 4, 8, 12주 동안 배양한 다음 25℃로 옮겨서 발아율을 측정하였다.

    고온층적처리 후 저온층적 실험을 수행하기 위하여 위와 같 은 방법으로 파종된 종자를 25℃로 유지되는 식물생장상에서 8주동안 배양 후 4℃ 식물생장상으로 옮겨 0, 4, 8, 12주 동안 저온층적처리 하였다. 저온층적처리가 끝난 후 다시 25℃ 식 물생장상으로 옮겨서 발아율을 측정하였다.

    GA3 처리에 의한 효과

    건조 보관 중인 종자를 0, 10, 100, 1000mg・L-1의 GA3 용액 에 24시간동안 침지 후 filter paper(Whatman No.1, GE Healthcare, Buckinghamshire, UK) 2장이 깔린 90mm × 15mm Petri dish에 파종하였다. 증류수를 이용하여 수분을 공 급한 후 parafilm(Bemis Flexible Packaging, Neenah, WI 54956, USA)으로 감아서 25℃ 식물생장상에서 배양하며 발아 율을 측정하였다.

    통계분석

    실험의 결과는 SAS(version 9.2; SAS Institute, Inc., Cary, NC, USA)를 이용하여 분산분석(ANOVA)을 하였다. 또한, 처 리의 평균간 통계적인 유의성은 Tukey’s honestly significant difference test(p<0.05)를 사용하여 검정하였다.

    결과 및 고찰

    종자의 휴면은 종자가 가지고 있는 고유의 특징으로 각각의 종자는 발아할 수 있는 적정 환경이 정해져 있으며, 각각의 고 유한 특성을 가지고 있다(Finch-Savage and Leubner-Metzger 2006). 종자의 휴면은 크게 5가지로 나눌 수 있는데, 그 특성 에 따라 물리적휴면(physical dormancy: PY), 생리적휴면 (physiological dormancy: PD), 형태적휴면(morphological dormancy: MD), 형태생리적휴면(morphophysiological dormancy: MPD), 조합휴면(combinational dormancy: PY+PD)으로 나누 어진다(Baskin and Baskin 2004). 물리적휴면은 종피 또는 과 피로 인하여 수분이 흡수되지 않기 때문에 발생하는 휴면이다 (Baskin et al. 2000;Baskin 2003;Baskin and Baskin 2004). 일반적으로 건조 종자 중량대비 24시간 안에 무게 증가율이 20%이상이면 물리적휴면이 없는 것으로 간주한다(Baskin and Baskin 2003). 제비붓꽃 종자의 수분흡수 실험결과 24시간 경 과 후 무게 증가율이 79.0 ± 2.4%였기 때문에 물리적휴면은 없는 것으로 판단하였다(Fig. 1).

    종자가 모체로부터 탈리되는 시점에 미숙배를 가지고 있다 면 형태적휴면이 있는 것으로 판단한다(Baskin and Baskin 2004). 종자가 모체로부터 탈리된 후 발아하기 직전까지 배의 추가적인 신장이 필요하다면 미숙배로 판단한다(Baskin and Baskin 2004). 제비붓꽃 종자의 경우 초기 배의 길이가 2.82 ± 0.11mm, 발아직전 배의 길이가 3.61 ± 0.10mm로 배의 길 이가 커진 것을 알 수 있다(Figs. 4, 5). 따라서 제비붓꽃 종자 는 미숙배를 가지고 있으며, 형태적휴면을 가지고 있는 것으 로 판단하였다. 이는 붓꽃과 식물의 일부가 형태적휴면을 가 지고 있다고 알려진 것과 동일하다(Jones and Kate 2014).

    종자의 생리적휴면은 가장 일반적인 휴면으로(Baskin and Baskin 2004) 배의 생리적 단계와 종피, 배유 등에 존재하는 호르몬 등의 조성에 의해서 발생한다(Baskin and Baskin 2014). 생리적휴면은 크게 deep PD, intermediate PD, non-deep PD 로 분류할 수 있으며(Nikolaeva 1969), deep PD의 경우, 휴면 이 타파되기 위하여 저온층적처리가 필요하고, GA3처리로는 휴면이 타파되지 않는 특징을 가지고 있다(Baskin et al. 2005). Non-deep PD의 경우 종에 따라 저온 혹은 고온층적처 리로 휴면이 타파되며, 휴면타파에 걸리는 기간이 짧은 특징 을 가지고 있다(Baskin et al. 2005). Intermediate PD는 고온 층적처리 또는 저온층적처리를 하여 타파할 수 있으며, 저온 층적처리를 2∼3개월 동안 상대적으로 긴 기간 처리할 경우 휴면을 타파할 수 있다(Baskin et al. 2005). 제비붓꽃 종자의 발아실험 결과 저온층적처리를 하지 않을 경우 16주동안 전혀 발아가 일어나지 않았기 때문에 생리적휴면을 가지고 있다고 판단하였다(Fig. 2). 제비붓꽃 종자의 발아특성을 살펴보면 5℃에서 0, 4, 8, 12주 동안 저온층적처리 후 25℃조건으로 바 꿀 경우 온도변화 1주 후 각각 0, 11.7, 43.4, 51.7%의 발아율 을 보였다(Fig. 2). 따라서 제비붓꽃 종자의 휴면은 생리적휴 면과 형태적휴면이 모두 존재하는 형태생리적휴면으로 분류 할 수 있다.

    형태생리적휴면은 미숙배를 가지고 있으면서 동시에 생리적 휴면을 가지고 있을 경우를 말한다(Baskin and Baskin 2004). 형태생리적휴면은 휴면타파에 필요한 온도요구, 배가 자라는 온도, GA3에 의해 휴면타파 여부, 배축휴면 여부 등을 기준으로 9가지 세부 그룹으로 나눌 수 있다(Baskin and Baskin 2014). 9가지 세부 그룹은 배가 자라는 온도를 기준으로 상대적 고온 에서 배가 자랄 경우 simple MPD, 저온에서 배가 자랄 경우 complex MPD로 구분한다(Baskin and Baskin 2014;Hidayati et al. 2000). 또한, 형태생리적휴면에 포함된 생리적휴면의 단 계에 따라 non-deep MPD, intermediate MPD, deep MPD로 나누어진다(Baskin and Baskin 2014;Hidayati et al. 2000). 제비붓꽃 종자의 경우 미숙배를 가지고 있고, 8주동안 25℃에 서 고온처리 후 각각 0, 4, 8, 12주 동안 4℃의 저온층적처리 기간을 거친 다음 다시 25℃로 옮길 경우 저온처리 기간에 따 라 0, 51.7, 85.0, 88.3%의 높은 발아율을 보이는 것을 알 수 있다(Fig. 3). 또한, GA3처리로는 휴면이 타파되지 않았기 때 문에 deep simple MPD로 보인다. Deep complex MPD로 판 단하지 않은 이유는 저온처리 이전에 고온처리를 통하여 발아 율이 향상되었기 때문에 고온이 포함된 처리에서 배가 자라거 나 휴면이 깨진다고 판단을 하였고, GA3를 통하여 휴면이 얕 아지거나 깨지지 않았기 때문에 deep complex MPD는 아닌 것으로 판단하였다.

    지금까지 붓꽃속 식물의 종자 휴면연구는 다양한 지역에 서 이루어져왔다. Table 1과 같이 미국 동부에 자생하는 I. missouriensis, 미국서부에 자생하는 I. versicolorI. tenax, 유럽, 북아프리카에 자생하는 I. pseudacorus 등 세계 각지에 자생하는 붓꽃속 식물 종자 휴면 연구 결과 모두 형태생리적휴면에 속하는 것으로 알려져 있다(Baskin and Baskin 2014;Jones and Kate 2014). 또한, I. shrevei, I. lactea, I. angustifolia, I. virginica 등 다양한 붓꽃속 식물 종자의 휴면 유형도 모두 형태생리적휴면으 로 알려져 있다(Baskin and Baskin 2014). I. tenax의 경우 고온처 리가 없을 경우 저온처리를 한다 해도 거의 발아하지 않는 경향을 보였으며, 고온처리 4주 후 저온 8주 처리했을 경우 80%이상 발아하였다(Jones and Kate 2014). 본 연구를 통하여 한국을 포함한 아시아에 자생하는 제비붓꽃 역시 다른 지역의 붓꽃속 식물과 같이 형태생리적휴면을 가지고 있는 것으로 판단된다. 이러한 결과는 붓꽃속 식물의 경우 지역적, 기후적 환경에 따른 진화의 과정에서 종자의 휴면유형은 크게 달라지지 않고 잘 유지되 었으며, 현재 가지고 있는 휴면 유형인 형태생리학적휴면이 붓꽃 속 식물이 생존하는데 적합한 유형임을 추론할 수 있다. 식물은 일반적으로 개체단위에서 이동할 수 없기 때문에 본연의 형질을 유지하는 것과 유전적 다양성을 유지하는 것의 균형을 잘 맞춰야 생존할 수 있다. 붓꽃속 식물의 경우 현재의 종자 휴면유형을 유지하는 것이 지금까지의 생존에 유리하므로 휴면유형의 변화 없이 MPD로 유지한 것으로 보인다.

    사 사

    이 논문은 국립수목원 “산림 유용자원 식물 지속적 활용 기 반 구축을 위한 증식기술 개발 연구(KNA1-2-40, 21-3)”의 지 원에 의해 수행되었음.

    Figure

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    Increase in seed mass of I. laevigata. Distilled water was supplied to the dried seeds to measure the weight increase rate over time. Error bars indicate mean ± SE (n = 3).

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    Germination of I. laevigata seeds as affected by cold (4℃) stratification treatment. Error bars indicate mean ± SE (n = 3). The different letters indicate significantly differences at p < 0.05 (Tukey’s HSD tests).

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    Germination of I. laevigata seeds as affected by warm (2 5℃) followed by cold (4℃) stratification. Error bars indicate mean ± SE (n = 3). The different letters indicate significantly differences at p < 0.05 (Tukey’s HSD tests).

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    Internal structure and developmental stages of Iris laevigata seeds. A, at dispersal; B, just before germination; C, a radicle; D, a seedling; and E, seedlings from the seeds. a, embryo; b, endosperm; and c, seed coat.

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    Comparison of the length of the embryos of Iris laevigata seeds at dispersal and just before germination. Error bars indicate mean ± SE (n = 5). The different letters indicate significantly differences at p < 0.05 (Tukey’s HSD tests).

    Table

    Seed dormancy by habitat of plants of the genus Iris.

    Reference

    1. Baskin CC (2003) Breaking physical dormancy in seeds– focussing on the lens. New Phytol 158:229-232
    2. Baskin CC , Baskin JM (2014) Seeds: Ecology, biogeography, evolution of dormancy and germination. Academic Press, San Diego, CA, USA
    3. Baskin CC , Baskin JM , Yoshinaga A , Thompson K (2005) . Germination of drupelets in multi-seeded drupes of the shrub Leptecophylla tameiameiae (Ericaceae) from Hawaii: A case for deep physiological dormancy broken by high temperatures. Seed Sci Res 15:349-356
    4. Baskin CC , Chien CT , Chen SY , Baskin JM (2008) Germination of Viburnum odoratissimum seeds: A new level of morphophysiological dormancy. Seed Sci Res 18:179-184
    5. Baskin JM , Baskin CC (2003) Classification, biogeography, and phylogenetic relationships of seed dormancy. In: Smith RD, Dickie JB, Linington SH, Pritchard HW, Probert RJ (eds) Sed conservation: Turning science into practice. The Royal Botanic Gardens, Kew, London, pp 518-544
    6. Baskin JM , Baskin CC (2004) A classification system for seed dormancy. Seed Sci Res 14:1-16
    7. Baskin JM , Baskin CC , Li X (2000) Taxonomy, anatomy and evolution of physical dormancy in seeds. Plant Species Biol 15:139-152
    8. Coops H , Van der Velde (1995) Seed dispersal, germination and seedling growth of six helophyte species in relation to water‐level zonation. Freshwater Biol 34:13-20
    9. Finch‐Savage WE , Leubner‐Metzger G (2006) Seed dormancy and the control of germination. New Phytol 171:501-523
    10. Grime JP , Mason G , Curtis AV , Rodman J , Band SR , Mowforth MAG , Neal AM , Shaw S (1981) A comparative study of germination characteristics in a local flora. J Ecology 1:1017-1059
    11. Hidayati SN , Baskin JM , Baskin CC (2000) Dormancy-breaking and germination requirements of seeds of four Lonicera species (Caprifoliaceae) with underdeveloped spatulate embryos. Seed Sci Res 10:459-469
    12. Jones KD , Kate TN (2014) Factors influencing germination of a functionally important grasslnad plant, Iris tenax. Plos One 9:e90084
    13. Kim HH , Park YW , Yoon PS , Choi HW , Bang JW (2004) Karyotype analysis of eight Korean native species in the genus Iris. Korean J Med Crop Sci 12:401-405
    14. Kim HT , Lee GM , Kim JG (2013) The ecological characteristics and conservation counterplan of menyanthes trifoliata habitat in floating mat in Korean east coastal lagoon, Sunyoodam. J Wetlands Res 15:25-34
    15. Ko CH , Lee SY , Choi KS , Kim DH , Kim SY , Lee KC (2017) Dormancy and seed germination in the endemic Korean plant Ligustrum foliosum Nakai. Flower Res J 25:124-132
    16. Korea National Arboretum(KNA) (2021) Accessed May 2019, http://www.nature.go.kr/kbi/plant/pilbk/selectPlantPilbkDtl.do
    17. Lee CB (1985) Illustrated flora of Korea. Hangmoonsa, Seoul, pp 228-230
    18. Lee SY , Lee YH , Kim YJ , Kim KS (2012) Morphological and morphophysiological dormancy in seeds of several spring ephemerals native to Korea. Flower Res J 20:193-199
    19. Lee YN (1996) Chromosome numbers of flowering plants in Korea. J Korean Cult Res Inst Better Living, Ewha Women’s Univ, 2:141-145
    20. Morgan MD (1990) Seed germination characteristics of Iris virginica. Am Midl Nat 124:209-213
    21. Nikolaeva MG (1969) Physiology of deep dormancy in seeds. Leningrad, Russia: Izdatel'stvo ‘Nauka’ (in Russian)
    22. Park JH (2004) Medicinal plants of Korea. Shinilsangsa, Seoul, pp 238-243
    23. Park SJ , Sim JK , Park HD (2002) A molecular systematic study of Korean Iris (Iridaceae) based on RAPD analysis. Korean J Plant Tax 32:383-396
    24. Purev O , Purevsuren C , Narantuya S , Lkhagvasyren S , Mizukami H , Nagatsu A (2002) New Isoflavones and flavanol from Iris potaninii. Chem Pharm Bull 50:1367- 1369
    25. Rahman AU , Nasim S , Balg I , Ara Jahan I , Sener B , Orhan I , Ayanoglu F , Choudhary MI (2004) Two new isoflovonoids from the rhizomes of Iris soforana. Nat Prod Res 18:465-471
    26. Rahman AU , Nasim S , Balg I , Ara Jahan I , Sener B , Orhan I , Choudhary MI (2002) Isoflovonoid glycosides from the rhizomes of Iris germanica. Chem Pharm Bull 50:1100- 1102
    27. Rahman AU , Nasim S , Balg I , Jalil S , Orhan I , Sener B , Choudhary MI (2003) Anti-inflammatory isoflovonoids from the rhizomes of Iris germanica. J Ethnopharmacol 86:177- 180
    28. Ryu SH , Rhie YH , Lee SY , Ko CH , Lee JS , Lee HJ , Lee KC (2017) Effect of after-ripening, cold stratification, and GA3 treatment on Lychnis wilfordii (Regel) Maxim seed germination. Hort Sci Technol 25:525-533
    29. Shipley B , Parent M (1991) Germination responses of 64 wetland species in relation to seed size, minimum time to reproduction and seedling relative growth rate. Funct Ecol 5:111-118